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CellTiter-Fluor™细胞活力测定

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一种测定培养中存活细胞相对数量的非裂解荧光测定法

  • 多重与许多其他发光分析
  • 活细胞数的归一化数据使结果与其他数据更具可比性

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CellTiter-Fluor™细胞活力测定
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化验是如何工作的

CellTiter-Fluor™细胞活力测定法是一种非溶性、单试剂添加的荧光测定法,可测量种群中存活细胞的相对数量。该方法基于活细胞中保守的和构成性蛋白酶活性的测量,因此可作为细胞活力的生物标志物。活细胞蛋白酶的活性被限制在完整的活细胞中,并使用一种含氟的、细胞透性的肽底物(gly - phy - afc)进行测定。底物进入完整的细胞,在那里被活细胞蛋白酶活性裂解,产生与活细胞数量成比例的荧光信号。活细胞蛋白酶在膜完整性的丧失和渗漏到周围的培养基中时变得不活跃。


细胞滴度-荧光细胞活力测定化学。

用CellTiter-Fluor™检测进行多路复用

CellTiter-Fluor™检测也可与其他下游检测化学试剂以单孔、顺序、多重格式使用,以按细胞数规范化数据。来自检测的数据可以作为一种内部控制,并允许识别由细胞聚集或复合细胞毒性引起的错误。在右边的例子数据中,离子霉素和PMA协同作用,刺激nfat依赖的基因表达;然而,较高浓度的离子霉素导致表达减少。通过同时监测活性与CellTiter-Fluor™检测,表明表达的减少是由于存活细胞的减少。

单井报告器和毒性分析

随着离子霉素浓度的增加,荧光素酶报告基因表达(ONE-Glo™检测)和细胞活力(CellTiter-Fluor™检测)。

细胞滴度荧光试验和Caspase-Glo 3/7试验的多重检测。

将CellTiter-Fluor™试剂添加到孔中,在37°C孵育30分钟后测定活力。加入Caspase-Glo®3/7试剂,孵育30分钟(10000个细胞/孔)后测量发光。

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