转染
转染协议和优化信息
本指南提供了转染方法的概述,并提供了选择转染试剂的示例协议和指导。访问转染试剂产品页面查看Promega转染试剂的订购信息。
转染导论
转染是用非病毒的方法将核酸引入真核细胞的过程。leyu体育靠谱吗通过使用各种化学或物理方法,这种基因转移技术可以在细胞环境中研究基因功能和蛋白质表达。报告基因系统的发展和转染DNA稳定维持和表达的选择方法大大扩展了转染的应用。基于分析的报告技术,加上大量转染试剂的可用性,为研究哺乳动物启动子和增强子序列提供了基础,反式-作用蛋白,如转录因子,mRNA处理,蛋白质:蛋白质相互作用,翻译和重组事件(Groskreutz和Schenborn, 1997)。

转染克服了将带负电荷的分子(如DNA和RNA的磷酸盐骨干)引入带负电荷膜的细胞的固有挑战。磷酸钙和二乙基氨基乙酯(DEAE)葡聚糖或阳离子脂基试剂包裹在DNA表面,中和甚至给分子赋予整体正电荷(图1)。这一过程使DNA转染试剂复合物更容易穿过膜,特别是对于具有“融合”成分的脂类,它增强了与脂质双分子层的融合。像微注射或电穿孔这样的物理方法只是穿透细胞膜,直接将DNA引入细胞质。下面将讨论这些转染技术中的每一种。

图1。常见转染方法示意图。化学方法中和DNA的负电荷,促进其吸收。脂基试剂也可以在形成胶束的同时包裹DNA。电穿孔使细胞膜瞬间具有更强的渗透性,允许DNA进入细胞。
本章涵盖了转染技术的一般信息以及转染效率和优化的考虑因素。此外,我们还讨论了各种转染试剂和一般转染方案,并给出了使用我们的转染试剂的具体例子。最后,我们回顾了稳定转染和概述了使用药物选择的方案。
化学试剂
deae -葡聚糖是一种阳离子聚合物,是最早用于转染培养的哺乳动物细胞的化学试剂之一(Vaheri和Pagano, 1965;McCutchan和Pagano, 1968)。过量的正电荷,由DNA:聚合物复合体中的聚合物贡献,使复合体与带负电荷的细胞膜更紧密地结合。复合物的摄取大概是通过内吞作用。该方法成功地将核酸送入细胞进行瞬时表达;leyu体育靠谱吗也就是说,对于几天的短期表达研究。然而,deae -葡聚糖一般不适用于依赖于将转移的DNA整合到染色体的稳定或长期转染研究。其他合成的阳离子聚合物已被用于将DNA转移到细胞中,包括聚苯乙烯(Kawai和Nishizawa, 1984),聚乙烯亚胺(Boussifet al。1995)和树状大分子(Haensler和Szoka, 1993;Kukowska-Latalloet al。1996)。
磷酸钙共沉淀作为转染方法在20世纪70年代初被引入(Graham and van der Eb, 1973)。这种方法仍然很受欢迎,因为成分容易获得,价格便宜,协议易于使用,对许多不同类型的培养细胞都有效。该方案包括将DNA与氯化钙混合,以可控的方式将这种混合物添加到缓冲盐水/磷酸盐溶液中,并在室温下培养混合物。控制的添加物产生沉淀,沉淀分散到培养的细胞上。沉淀被细胞通过内吞作用或吞噬作用吸收。磷酸钙转染通常用于各种细胞类型的瞬时和稳定转染。然而,磷酸钙共沉淀容易发生变异,不适合在体内基因转移到整个动物。此外,微小的pH变化(±0.1)会影响转染效率(Felgner, 1990)。
由于它们的缺点,化学试剂在很大程度上已经被合成脂基试剂所取代。
阳离子脂质
“脂质体”是指在水介质中形成胶体颗粒的脂质双分子层(Sessa和Weissmann, 1968)。人造脂质体在1980年首次被用于将DNA输送到细胞中(Fraleyet al。1980)。脂质体载体的下一个进展是合成阳离子脂质的发展(Felgneret al。1987)。脂类化合物的阳离子头基与核酸上带负电荷的磷酸盐结合。leyu体育靠谱吗脂质体介导的传递具有一些优势,如相对高效的基因转移,转染对磷酸钙或deae -葡聚糖具有抗性的特定细胞类型的能力,在体外和体内应用,从寡核苷酸到酵母人工染色体的所有大小的DNA的成功传递,RNA的传递和蛋白质的传递(在Kim和Eberwine, 2010;斯图尔特et al。2016)。脂质体技术转染的细胞可用于瞬时表达研究和依赖DNA整合到染色体或片段维持的长期实验。与deae -右旋糖酐或磷酸钙化学方法不同,脂质体介导的核酸传递可用于在体内将DNA和RNA转移到动物和人类(Felgnerleyu体育靠谱吗et al。1995).
在生理pH值下具有整体净正电荷的脂质体是用于基因传递的脂质体中最常见的成分(图2)。通常,阳离子脂质体与中性脂质体混合,如L -二油酰磷脂酰乙醇胺(DOPE;图3),可以增强基因转移能力。脂质分子的阳离子部分与带负电荷的核酸结合,导致脂质体/核酸复合体中的核酸压实(Kabanov和Kabanov, 1995;leyu体育靠谱吗Labat-Moleuret al。1996)。对于培养的细胞,脂质体/核酸复合物的整体净正电荷通常会导致更高的转移效率,大概是因为它允许复合物与带负电荷的细胞膜更紧密地结合。leyu体育靠谱吗脂质体复合体进入细胞可能通过脂质体的脂质部分内吞或与质膜融合发生(Gao和Huang, 1995)。在细胞内化之后,复合物出现在核内体中,随后出现在细胞核中。目前还不清楚核酸是如何从核内体和溶酶体中释放leyu体育靠谱吗并穿过核膜的。DOPE被认为是一种“融合性”脂质(Farhoodet al。1995年),其作用可能是释放核内体中的这些复合物,以及促进外细胞膜与脂质体/核酸复合物的融合。leyu体育靠谱吗虽然转染的DNA需要进入细胞核,但细胞质是通过脂质体传递的RNA、蛋白质或反义寡核苷酸的作用位点。

图2。合成的阳离子脂类的一般结构。X, Y和Z代表一些可能的化学部分,它们可能不同,取决于特定的脂质。

图3。中性脂质涂料的结构。ViaFect™转染试剂(猫。# E4981)是一种高效低毒的阳离子配方,设计用于将DNA转染到多种细胞系中。它特别适合传统上难以转染的细胞类型。
Nonliposomal试剂
虽然脂质体转染试剂有广泛的应用,但它们可能不是对所有细胞类型都有效。非脂质体转染试剂可替代脂质体介导的转染方法。这类试剂包括能够与DNA或RNA形成复合物的聚合物,以及能在水溶液中形成胶束的其他类型的脂类。与脂质体转染试剂一样,它们具有低毒、可复制的结果和高效率,适用于各种类型的细胞。脂质纳米颗粒是这种转染方法的延伸,特别适合在临床研究和治疗应用中传递小分子药物(Cullis and Hope, 2017)。
非脂质体转染试剂的例子包括FuGENE®HD转染试剂(猫。# E2311),适用于难以转染的细胞类型,FuGENE®6转染试剂(猫。# E2691),适用于多种细胞系,高效、低毒。你应该根据经验为特定的细胞类型确定最佳的转染试剂和条件,因为细胞的固有特性影响任何特定转染方法的成功。
物理方法
基因转移的物理方法始于20世纪80年代初。直接微量注射到培养的细胞或细胞核是一种有效但费力的技术,使用细针将核酸注入细胞(Cappechi, 1980)。leyu体育靠谱吗这种方法被广泛用于引入外来DNA非洲爪蟾蜍卵母细胞和果蝇胚胎。尽管相对低效,微注射仍然被用于将DNA转移到胚胎干细胞中,用于生产转基因生物(Bockampet al。2002),特别是对农场动物的基因研究(Wall, 2001)。最近,微注射在基因编辑应用中重新流行起来。例如,它已被用于将CRISPR-Cas9 DNA交付到合子原核,以创建敲除猪(Chuanget al。2017)。
电穿孔首次被报道用于小鼠细胞的基因转移研究(Wong和Neumann, 1982)。其机制是基于使用电脉冲扰动细胞膜,形成瞬时孔,允许核酸通过进入细胞(Shigekawa和Dower, 1988)。leyu体育靠谱吗该技术需要优化每种类型电池的脉冲持续时间和强度。电穿孔通常比化学方法需要更多的细胞,因为它会导致大量的细胞死亡,而且通常需要大量的优化来平衡转染效率和细胞活力。现代仪器允许核酸运送到细胞核和成功转移DNA和RNA到原代细leyu体育靠谱吗胞和干细胞。在微流体装置中,电穿孔也与细胞的物理收缩相结合et al。2017),用于高通量格式的快速基因表达。
另一种物理转染方法是生物粒子传递,也称为粒子轰击。这种方法依赖于通过膜穿透将核酸在微弹丸上高速递送到受体细胞leyu体育靠谱吗et al。1990)。它已被用于向培养细胞和体内细胞输送核酸(Kleinleyu体育靠谱吗et al。1987;霍尔德et al。1993;Oguraet al。2005)。最初,粒子轰击仪器的高成本阻碍了它们在研究中的应用,该方法主要用于农业遗传学。然而,最近纳米颗粒技术的发展开辟了新的应用领域。纳米粒子是一种合成材料,其中至少有一个粒子尺寸小于100nm。由于纳米颗粒体积小,可以高效穿过细胞膜,并通过共价或非共价相互作用与DNA和RNA结合(An and Jin, 2012)。这些特性已被用于培育转基因动物,作为原核微注射或病毒载体的替代方法(Dziegiel, 2016)。这种方法的一种变体是使用氧化铁纳米颗粒在强磁场存在的情况下进行基因传递,或称为“磁完美”(Dziegiel, 2016)。
一般考虑
试剂的选择
任何转染试剂都不适合在所有细胞类型和所有条件下使用,任何试剂都需要优化实验条件。有这么多不同的基因转移方法,你如何选择正确的转染试剂或技术,以满足你的需要?虽然传统的化学转染方法仍在使用,但脂质试剂因其易于使用和适用于各种类型的细胞而变得流行。Lipofectamine试剂(Thermo Fisher)及其更新的衍生物广泛用于瞬时和稳定转染实验。FuGENE®6和FuGENE®HD产品也很受欢迎leyu乐鱼网,因为它们易于使用和与各种细胞系兼容。
常用转染试剂在许多常见细胞系中的性能见表1。转染通过萤火虫荧光素酶的表达进行评估。对每种转染试剂选择最佳条件(最高rlu)。对于每个细胞系,一种试剂的最大rlu设置为100%,其他三种试剂与该读数进行比较。细胞活力也被测定,并与每个细胞系的未转染对照进行比较。本表未见转染效率低于50%的报道。ViaFect™试剂的性能与Lipofectamine®2000试剂类似或更好,它可能适用于一些其他脂基试剂导致转染效率较低的细胞系(表1)。在脂基试剂不合适的情况下,电穿孔可能是一种替代方案;然而,由于细胞活力降低,需要更多的细胞。
表1。转染试剂的比较。
细胞系 | FuGENE®6 | FuGENE®高清 | ViaFect™试剂 | 竞争对手L2K | |||||
经验值 | 通过 | 经验值 | 通过 | 经验值 | 通过 | 经验值 | 通过 | ||
A549 | ++ | ++ | +++ | +++ | +++ | +++ | |||
C2C12 | +++ | +++ | |||||||
赵 | ++ | +++ | +++ | ++ | ++ | ++ | |||
COS7 | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ | |
H9C2 | +++ | +++ | ++ | +++ | |||||
HCT116 | +++ | ++ | +++ | +++ | ++ | ++ | |||
HEK 293 | ++ | ++ | +++ | +++ | |||||
海拉 | +++ | +++ | ++ | +++ | |||||
HepG2 | +++ | ++ | |||||||
HT-29 | +++ | +++ | +++ | +++ | |||||
Huh7 | +++ | ++ | ++ | ++ | |||||
Jurkat | +++ | +++ | ++ | +++ | |||||
K562 | +++ | +++ | |||||||
LNCaP | +++ | +++ | |||||||
MCF7 | +++ | +++ | +++ | +++ | |||||
NIH 3 t3 | ++ | +++ | +++ | +++ | |||||
PC-12 | ++ | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ | |||
曲泽 | +++ | +++ | +++ | +++ | |||||
生264.7 | +++ | ++ | +++ | ++ | ++ | ++ | |||
U2OS | ++ | +++ | +++ | +++ | |||||
+++ | 最大rlu的80%;80%的细胞存活 | ++ | 50%至<80%最大RLUs;50% ~ <80%的细胞存活 |
EXP,基于转染荧光素酶基因表达的转染效率;VIA,通过CellTiter-Fluor™细胞活力测定法评估细胞活力,并与未转染对照组进行比较 |
任何时候引入一个新的参数,比如一个新的细胞系,你都需要确定转染的最佳条件。这个过程可能涉及到选择新的转染试剂。例如,一种试剂可能对HEK-293细胞有效,但当使用HepG2细胞时,另一种试剂可能是更好的选择。的转染助理提供下拉菜单选择细胞系和FuGENE®HD或FuGENE®6转染试剂转染条件。这些条件应仅作为指导方针,因为您可能需要针对您的特定应用优化转染条件。看到优化转染效率而且一般转染协议获取详细信息。
瞬时表达与稳定转染
另一个要考虑的参数是你希望进行的实验的时间范围。例如,确定哪些启动子缺失结构仍然可以作为启动子功能可以通过短暂转染实验来完成,而建立外源导入基因结构的稳定表达则需要更长期的实验。稳定转染的结果是将转染的基因整合到宿主细胞基因组中,这对于研究基因表达的长期效应或创建具有新特性的细胞系用于进一步的实验是有用的,例如,在发现实验中筛选潜在的候选药物。
瞬时表达
细胞通常在转染后的24-72小时内收集,用于分析转染基因的瞬时表达。最佳时间间隔取决于细胞类型、研究目标和转移基因的特异性表达特征。基因产物的分析可能需要分离RNA或leyu乐鱼网蛋白质进行酶活性测定或免疫测定。采集细胞的方法取决于所测定的最终产物。例如,萤火虫荧光素酶基因在pGL4.10中的表达[luc2向量(猫。# E6651)一般在转染后24-48小时检测,而pGL4.12[luc2CP向量(猫。# E6671)及其蛋白质降解序列可以在更短的时间框架内(例如,3-12小时)进行测定,这取决于研究目标和报告基因达到稳定表达所需的时间。
当执行瞬时转染时,您可以选择标准或反向转染协议。在标准的转染方案中,细胞在第1天被镀,在第2天被转染,在第3天或第4天被检测。在反向转染方案中,细胞被直接添加到含有转染试剂/DNA混合物的培养皿中,并在第2天或第3天进行检测。由于细胞是直接添加到DNA上的,这一过程减少了一天的实验时间,并允许以平板或微阵列格式进行高通量的DNA转染。有关反向转染的更多信息,参见a协议使用FuGENE®6和FuGENE®HD试剂。
稳定转染
稳定、长期转染的目标是分离和繁殖包含已整合到细胞基因组的转染DNA的单个克隆。将未转染的细胞与吸收了外源DNA的细胞区分开需要选择性筛选。当适当的耐药标记包含在转染的DNA中时,这种筛选可以通过药物选择来完成。另外,形态转化在某些情况下也可作为可选择的性状。例如,牛乳头瘤病毒载体在转染的小鼠CI127细胞中产生形态学变化(Sarveret al。1981)。
在使用特定药物进行选择之前,您需要确定杀死非转染细胞所需的药物量。这个量在细胞类型之间可能有很大的差异,应该针对每一个被转染的新细胞系进行优化。
当使用药物选择时,转染后细胞在非选择性培养基中维持1-2天,然后在含有药物的选择性培养基中复制。继续使用选择性培养基2-3周,并频繁更换培养基以清除死细胞和碎片,直到可以看到明显的菌落。单个菌落可以通过克隆柱分离,选择并转移到多孔板上,在选择介质存在下进一步繁殖。在药物治疗中存活下来的单个细胞扩展成可以单独繁殖和鉴定的克隆群。有关选择抗生素转染细胞的协议,请参见稳定转染.
几种不同的药物选择标记通常用于长期转染研究。例如,转染含有新霉素磷酸转移酶细菌基因的重组载体的细胞[例如,pCI-neo哺乳动物表达载体(猫。# E1841)]可选择在新霉素类似物G-418存在下进行稳定转化(猫。# V8091).同样,从转染载体中表达的湿霉素B磷酸转移酶基因[例如,pGL4.14(luc2/ Hygro)向量(猫。# E6691会使人对湿霉素B产生耐药性。
另一种替代策略是使用载体携带在特定细胞系中有缺陷的基本基因。例如,缺乏二氢叶酸还原酶(DHFR)基因表达的CHO细胞在没有添加核苷的情况下无法存活。然而,当这些细胞稳定转染表达DHFR基因的DNA时,将合成所需的核苷并存活。使用DHFR作为标记的另一个优点是,当细胞暴露于剂量增加的甲氨喋呤时,DHFR和相关转染DNA的基因扩增会发生,导致转染细胞中质粒的多个副本(Schimke, 1988)。
转染的分子类型
质粒DNA最常被转染到细胞中,但其他大分子也可以被转移。例如,DNA寡核苷酸、小干扰RNA (siRNA)、蛋白质和核糖核蛋白复合物(RNPs)已经通过转染方法成功地导入细胞(Stewart中有评论)et al。2016)。然而,当使用其他大分子时,质粒DNA转移的条件可能需要优化。在所有情况下,转染的试剂都需要高质量和相对纯净。leyu体育靠谱吗核酸应不含蛋白质、其他受污染的核酸和化学物质(如低聚合成的盐)。蛋白质应该是纯的,并且在对细胞健康无害的溶剂中。
转染的分析
细胞转染后,如何判断是否成功?含有报告基因的质粒可以用来方便地监测转染效率和细胞中的表达水平。理想的报告基因产物是细胞特有的,可以从质粒DNA中表达,并且可以方便地测定。一般转染后1-3天进行报告基因检测;最佳时间应根据经验确定。对感兴趣的蛋白质进行功能检测,如酶促试验,可能是确定转染成功的另一种方法。
就siRNA而言,可以通过报告基因或检测目标mRNA(如RT-PCR)或蛋白质(如免疫测定法)的表达水平来衡量是否成功。
如果要进行多种检测,请确保所选择的技术与所有检测化学成分兼容。例如,如果裂解物来自转染的细胞,理想情况下使用的裂解缓冲液将与所有后续的分析兼容。此外,如果评估后需要细胞进行繁殖,请确保在检测后保留一些存活细胞供传代。
影响转染效率的因素
对于任何转染试剂或方法,细胞健康、融合度、传代数、污染、DNA质量和数量都是可以极大影响转染效率的重要参数。注意,使用任何转染试剂或方法,都会发生一些细胞死亡。
细胞健康
细胞应在适合细胞系的培养基中生长,并根据生存能力的需要添加血清或生长因子。被污染的细胞和培养基(例如,被酵母或支原体污染的细胞和培养基)不应用于转染。如果细胞以任何方式受损,丢弃它们,并从未受污染的冷冻库存中重新播种。如果有任何组件不稳定,请确保介质是新鲜的。缺乏必要因子的培养基会损害细胞生长。确保37°C培养箱提供CO2在正确的百分比(通常是5-10%)和保持100%的相对湿度。
如果您不确定是什么类型的培养基或CO2您感兴趣的细胞系的水平需要咨询美国类型文化收藏[ATCC]网站.
Confluency
作为一般准则,转染细胞在40-80%的一致性。细胞太少会导致培养物在没有细胞间接触的情况下生长不良。过多的细胞会导致接触抑制,使细胞抵抗外来DNA的吸收。积极分裂的细胞比静止的细胞更能吸收引入的DNA。
数量的段落
保持较低的段落数(<50)。此外,各种实验中使用的细胞传代数应保持一致。永生化细胞系的细胞特性会随着时间的推移而改变,细胞在重复传代后可能对相同的转染条件没有反应,导致转染基因的表达不佳。
DNA质量和数量
用于转染的质粒DNA应不受蛋白质、RNA、化学物质和微生物污染。将乙醇沉淀的DNA悬浮在无菌水中或TE缓冲液中至最终浓度0.2-1mg /ml。在转染中使用的最佳DNA量会有很大差异,这取决于DNA类型、转染试剂、目标细胞系和细胞数量。
优化转染效率
你需要优化特定的转染条件,以达到预期的转染效率。需要考虑的重要参数是阳离子脂质转染试剂对DNA的荷电比、转染核酸的数量、细胞接触转染试剂的时间长短以及血清的存在与否。leyu体育靠谱吗报告基因对确定最佳条件很有用。使用任何转染试剂获得的转染效率取决于被转染的细胞类型和使用的转染条件。
阳离子转染试剂与DNA的电荷比
转染试剂的阳离子脂质组分贡献的正电荷量应该等于或超过DNA骨干上的磷酸盐贡献的负电荷量,导致与DNA结合的多层囊泡上的净中性或正电荷。如果培养液中含有血清(Chanet al。2014;Tranchantet al。2004)。
DNA量
最佳的DNA量取决于核酸的类型、细胞的数量、培养皿的大小和所使用的目标细胞系。leyu体育靠谱吗例如,用100ng的pGL4.13转染COS-7细胞是最佳的[luc2/ SV40]向量(猫。# E6681)在96孔板中以4:1的比例使用ViaFect™试剂。相比之下,在相同的孔大小中,使用FuGENE®HD转染试剂以3:1的比例转染50ng的DNA,对相同的细胞进行最佳转染。对于其他细胞系,我们建议检测表2中给出的DNA量。
表2。建议用于优化的DNA数量。
转染试剂 | 检测DNA量 | 试剂:DNA比测试 | 培养皿大小 |
ViaFect™试剂 | 0.05 - -0.1µg | 6:1, 5:1, 4:1, 3:1, 2.5:1和2:1 | 96孔板 |
FuGENE®6转染试剂 | 0.04 - -0.2µg | 4:1, 3.5:1, 3:1, 2.5:1, 2:1, 1.5:1 | 96孔板 |
FuGENE®HD转染试剂 | 0.04 - -0.2µg | 4:1, 3.5:1, 3:1, 2.5:1, 2:1, 1.5:1 | 96孔板 |
显著增加转染DNA的数量可能不会产生更好的结果。事实上,如果最初的转染结果是令人满意的,可以检测减少的DNA数量(同时保持最佳试剂:DNA比例恒定)。通常有一个适合转染的DNA浓度范围。然而,如果DNA浓度低于或高于这个范围,转染效率将下降。如果DNA太少,实验反应可能不会出现。如果DNA过多,过量的DNA就会对细胞产生毒性。使用带有报告基因功能的测试质粒校准系统。
时间
传统上,转染试剂必须与细胞保持一定的接触时间,之后添加额外的培养基或更换培养基,以帮助减少试剂的毒性作用。最佳转染时间取决于细胞系、转染试剂和使用的核酸。leyu体育靠谱吗ViaFect™转染试剂和FuGENE®HD转染试剂是两种较为温和的DNA转染细胞的方法,转染后不需要添加更多的培养基或更换培养基。
对于需要添加或更换培养基的脂质体试剂的初步测试,使用1小时的转染间隔,测试转染时间为30分钟到4小时,甚至过夜,这取决于所使用的试剂。监测转染间隔期间的细胞形态,特别是当细胞在无血清培养基中维持时,因为一些细胞系在这些条件下失去活力。
血清
转染协议通常要求无血清条件下的最佳性能,因为血清可以干扰许多市售的转染试剂(Chanet al。2014)。ViaFect™和FuGENE®HD转染试剂可用于有血清存在的转染协议,非常适合转染细胞类型(例如,原代细胞)或需要持续暴露于血清的应用。请注意,当不同批次的血清之间的变异最小化时,可以获得最佳结果。
共转染和双报告基因分析
尽管许多实验使用单一报告基因,但双报告基因系统具有明显的优势。第二个报告基因可以正常表达转染效率和细胞数量。转染细胞生长条件的微小扰动可以显著影响基因表达。第二个报告者帮助确定这些效应是由于细胞的处理还是来自实验报告者的反应。
Nano-Glo®双荧光素酶报告检测系统(NanoDLR) (猫。# N1610)是一种定量来自同一样本中两个报告基因的发光信号的有效方法。在这个系统中,萤火虫(Photinus pyralis)和NanoLuc®荧光素酶活性以均匀格式从单个样品中顺序测量。在NanoDLR™系统中,两种报告物均产生线性分析反应(相对于酶的数量),且在实验宿主细胞中无内源性活性。此外,报告信号的延长半衰期非常适合用于多井分析格式。
各种PromegaRenilla荧光素酶载体可作为对照载体,当与萤火虫荧光素酶载体共转染时,感兴趣的启动子被克隆到其中。或者,可以使用萤火虫载体作为控制载体,使用NanoLuc®荧光素酶载体作为实验结构。在共转染实验中,注意共转染质粒上启动子之间的反式效应可能会潜在地影响报告基因的表达。当控制或实验报告载体或两者都包含非常强的启动子/增强子元素时,这主要是值得关注的。这种影响的发生和程度将取决于以下几个因素:1)共转染载体上基因调节元件的组合和活性;2)引入细胞的实验载体与控制载体的数量及相对比例;3)转染的细胞类型。
为保证实验报告基因和对照报告基因的独立遗传表达,应进行初步共转染实验,优化共报告基因的载体DNA量和比例。由于NanoLuc®荧光素酶产生非常明亮的信号,因此可以使用非常少量的这些载体来提供NanoLuc®荧光素酶活性的低水平、本质共表达。这意味着萤火虫和NanoLuc®荧光素酶载体与测试载体的比例可以从1:1到10000:1(或更大)来确定最佳表达。双报告器系统的关键是实现实验报告器表达的最大化,控制报告器表达的最小化。然而,控制报告器的表达水平应高于背景三个标准差为显著。
启动子在细胞系统中的强度是一个重要的考虑因素。表达更适度的启动子如胸苷激酶[TK;例如,pNL1.1.TK (Nluc/TK)]矢量(猫。# N1501)]可能优于SV40或CMV。更强的启动子可能表现得更多反式效应、串音或监管问题。然而,调整实验向量与控制向量的比例(例如,使用100:1或200:1)可能会消除这些问题。
一般转染协议
准备转染细胞
用胰蛋白酶去除粘附细胞
在继代培养或细胞计数前对细胞进行胰蛋白酶化是成功培养细胞的一项重要技术。下面的技术在传代细胞时始终有效。
所需的材料:
- 1 x trypsin-EDTA解决方案
- 1X PBS或1X HBSS
- 粘附细胞进行传代培养
- 适当的生长培养基(如DMEM),添加血清或生长因子或两者
- 培养盘,烧瓶或多孔盘,根据需要
- 血细胞计数器
- 准备无菌胰蛋白酶- edta溶液在无钙和无镁盐溶液中,如1X PBS或1X HBSS。1X溶液可以冷冻和解冻以备将来使用,但胰蛋白酶活性会随着每一次冻融循环而下降。胰蛋白酶- edta溶液可在4℃保存1个月。
- 从组织培养皿中取出培养基。加入足够的PBS或HBSS以覆盖细胞单层:150mm烧瓶2ml, 100mm平板1ml。摇动盘子,使溶液均匀分布。取出并重复清洗。取出最后的清洗。加入足够的胰蛋白酶溶液覆盖细胞单层。
- 将培养皿置于37°C的培养箱中,直到细胞刚刚开始分离(通常为1-2分钟)。
- 从培养箱中取出烧瓶。用手掌猛击培养容器的底部和两侧,以帮助清除剩余的粘附细胞。在显微镜下观察细胞,检查是否所有细胞都已脱离生长表面。如有必要,可将细胞放回培养箱再培养1-2分钟。
- 当所有细胞分离后,向细胞中加入含有血清的培养基使胰蛋白酶失活。轻轻地用移液管将细胞团块打碎。细胞计数可以使用血细胞计,分配到新鲜的平板进行传代培养,或两者兼有。
通常情况下,细胞被传代培养为第二天的转染做准备。传代培养应使感兴趣的细胞达到转染所需的合流点。作为一般的指导方针,24孔板每孔5 × 10腋细胞或60mm培养皿5.5 × 10 35腋细胞转染当天的融合率约为80%。对于不同尺寸的板,按比例改变单元数(见表3)。
表3。细胞生长培养板面积。
板的大小 | 增长领域一个²(厘米) | 相对面积b |
24-well | 1.88 | 1 x |
96年好 | 0.32 | 0.2倍 |
12-well | 3.83 | 2 x |
6-well | 9.4 | 5倍 |
35毫米 | 8.0 | 4.2倍 |
60毫米 | 21 | 11 x |
100毫米 | 55 | 29 x |
一个该信息是针对康宁®培养皿计算的。
b相对面积表示为用于优化研究的24井板总生长面积的一个因子。要确定合适的电镀密度,请将5 × 10。cells乘以这个因子。
为转染准备DNA
不含核酸酶、RNA和化学物质的高质量DNA与选择转染试剂同样重要。看到DNA纯化指南获取有关纯化转染质量DNA的信息。
使用ViaFect™试剂的示例协议
我们强烈建议您优化每个细胞系的转染条件。如果你已经优化了转染参数,使用经验确定的条件进行实验转染。
如果您选择不优化转染参数,请使用下面推荐的一般条件。
材料要求:
- 含有适合被转染细胞类型的血清的细胞培养基
- 用于复杂形成的无血清细胞培养基(如Opti-MEM®I减血清培养基)
- 96孔或其他培养板
- U型或v型底稀释板或微型离心管
96孔板每孔添加的转染复合物(培养基、DNA和ViaFect™转染试剂)的总体积为5-10μl。以下协议是转染大约10-20孔的指导方针,取决于ViaFect™转染试剂的体积:使用的DNA混合物。对于额外的井,相应地调整体积。
- 在无菌管或U型或v型底板上,加入预温至室温的无血清培养基90-99μl,使加入DNA后的最终体积为100μl。向培养基中加入1μg质粒DNA,混合。对于3:1的ViaFect™转染试剂:DNA比例,加入3μl的ViaFect™转染试剂,并立即混合。
- 在室温下孵育ViaFect™转染试剂:DNA混合物5-20分钟。
可选:将混合物添加到细胞中而不需孵育期。
请注意:较长的孵育时间可能会对转染产生不利影响。 - 每孔加入5-10μl的ViaFect™转染试剂:DNA混合物到96孔板中,培养液中含有100μl的细胞。我们建议从10μl的混合物开始。通过移液或用摇盘器轻轻混合10-30秒。将细胞放回培养箱24-48小时。
请注意生长培养基的总体积可能因井型和实验室的常规操作而异。 - 使用适合报告基因的测定方法测量转染效率。对于短暂转染,细胞通常在转染后24-48小时进行检测。
优化脂质试剂转染
在前几节中,我们讨论了影响转染成功的因素。在这里,我们提出了一种方法,以优化转染一个特定的细胞系与单一转染试剂。对于更现代的脂基试剂,如ViaFect™转染试剂,我们建议最初测试96孔板的每孔50-100ng DNA,试剂:DNA比例为3:1或4:1的粘附细胞系或2:1的悬浮细胞系。图4概述了一个典型的优化矩阵。在制备ViaFect™转染试剂:DNA复合物时,孵育时间可能需要优化;建议5-20分钟。

图4。使用ViaFect™转染试剂进行转染优化。TF-1细胞在白色96孔实验板上以每孔30,000个细胞的数量被镀在无抗生素的生长培养基中,并转染CMV-luc2质粒使用各种脂质(ViaFect™转染试剂):DNA比例。DNA浓度保持在每100μl opt - mem®I还原血清培养基1μg不变,并改变ViaFect™转染试剂的数量以获得指示的比例。在96孔板细胞中分别加入5或10μl转染复合物。转染24小时后,进行ONE-Glo™+ Tox荧光素酶检测。注意0:1为阴性对照,含DNA但无脂质。这些结果表明,对于这个特定的细胞系,2:1 ViaFect™转染试剂:DNA的比例提供了最佳的结果。
对于传统的阳离子脂质试剂,我们建议在脂质试剂与DNA的两种电荷比(2:1和4:1)下检测不同数量的转染DNA(24孔板中0.25、0.5、0.75和1 μ g /孔);这个简单的优化可以在无血清条件下使用1小时的转染间隔来完成。每个试剂需要一个24孔培养板与贴壁细胞进行简短优化(每个DNA量3个重复)。

图5。初步优化阳离子脂质转染条件的建议电镀格式。
可以进行更彻底的优化,以筛选附加电荷比、时间点和含血清培养基在初始优化研究中发现的最佳DNA量的影响。对许多细胞系来说,1小时或2小时的转染间隔是最佳的。然而,在某些情况下,可能有必要在这些范围之外测试电荷比和转染间隔,以实现最佳的基因转移。
有些转染方法需要孵育后用试剂去除培养基;别人不。阅读所选转染试剂的技术文献,了解哪种方法适合您的系统。然而,如果在转染过程中细胞过度死亡,考虑减少与转染试剂接触的时间,减少添加到细胞中的DNA和试剂的数量,镀膜额外的细胞,在孵育期后去除试剂,添加完整培养基。
端点检测
许多瞬时表达分析使用裂解报告分析,如双荧光素酶®分析系统(猫。# E1910)和Bright-Glo™检测系统(猫。# E2610)转染后24小时。Nano-Glo®双荧光素酶报告检测系统(猫。# N1610)可以在转染后的几个小时内检测到。然而,根据蛋白质表达水平的不同,大多数检测的时间框架可能有所不同(转染后24-72小时)。报告蛋白测定法使用比色法、放射性法或发光法来测定细胞裂解液中存在的酶活性。有些检测方法(如荧光素酶检测系统)要求去除培养基后将细胞溶解在缓冲液中,然后与单独的检测试剂混合,以确定荧光素酶活性。其他的是均相分析(如Bright-Glo™检测系统),包括裂解试剂和测定试剂在同一溶液中,可以直接添加到培养基中的细胞。检查报告基因分析结果并确定表达量最大(最高读数)的位置。这些是用于您感兴趣的构造的条件。
可供选择的检测方法包括细胞的组织化学染色(确定在报告基因底物存在时被染色的细胞的百分比;图6)、荧光显微镜(图7)或细胞分选,如果使用荧光报告器如Monster Green®荧光蛋白phMGFP Vector (猫。# E6421).

图6。RAW 264.7细胞组织化学染色β牛乳糖活动。RAW 264.7细胞转染时,每孔使用0.1µg DNA, FuGENE®HD与DNA的比例为3:1。复合物形成5分钟后,将5 μ l的复合物混合物应用于96孔板中的50000个细胞/孔。转染24小时后,用X-gal对细胞进行β-半乳糖苷酶活性染色。数据由Fugent, LLC提供。

图7。ViaFect™转染试剂转染细胞的荧光显微镜。用ViaFect™转染试剂转染96孔板中的iCell®人组织细胞,转染后以指定试剂:DNA比和GFP表达对GFP报告质粒进行成像。面板。转染后一天,iCell®肝细胞的试剂:DNA比例为6:1。面板B。转染后1天,iCell®心肌细胞与2:1试剂:DNA比成像。面板C。iCell®dop动脉瘤与4:1试剂:DNA比转染后三天成像。数据由国际细胞动力学提供。
实时检测
对于某些类型的转染实验,特别是那些检查与病理机制相关的基因表达水平变化的实验,监测活细胞中的报告活性是必要的。这样的实时分析可以提供有价值的信息,以动态的方式表达多个基因。Nano-Glo®活细胞检测选项(猫。# N2011)设计用于使用非裂解协议检测活细胞的NanoLuc®发光。这些测定在单个时间点或连续72小时监测发光,而不影响细胞活力。
稳定转染
选择稳定转染细胞
稳定转染的优化从成功的瞬时转染开始。然而,细胞应转染含有耐药基因的质粒,如新霉素磷酸转移酶(neo).作为阴性对照,用不含耐药标记的DNA转染细胞。
- 转染前,确定杀死非转染细胞所需的选择性药物浓度。
- 转染48小时后,胰蛋白酶化贴壁细胞,并在含有适当选择药物的培养基中以不同稀释倍数(如1:100,1:500)进行复片。为了进行有效的选择,细胞应该是次融合的,因为融合的非生长细胞对G-418等抗生素的作用具有耐药性。
- 在接下来的14天里,每3 - 4天更换一次含药物的培养基。
- 在第二周,观察存活细胞的不同“岛屿”。耐药克隆可在2-5周内出现,取决于细胞类型。在转染阴性对照质粒的培养物中,细胞死亡应在3-9天后发生。
- 通过标准技术(例如,使用克隆瓶)将单个克隆转移到96孔板上,并在含有适当药物的培养基中继续保持培养。
表4概述了用于选择和维持稳定转染物的常用抗生素。
表4。用于选择稳定转染物的抗生素。
抗生素 | 耐药基因 | 工作浓度 | 股票的解决方案 |
g - 418或Geneticin® | 氨基糖苷(如新霉素)磷酸转移酶 | g -418常用于500µg/ml的初始筛选,范围为50 - 1000µg/ml | 50mg/ml在水中或100mM HEPES (pH 7.3);后者缓冲液有助于维持培养基pH值 |
潮霉素(Hygro) | hph | 10 - 400µg / ml | 100毫克/毫升的水 |
嘌呤霉素(嘌呤霉素) | pac | 1 - 10µg / ml | 10mg/ml水或HEPES缓冲液(pH 7.0) |
计算稳定转染效率
以下程序可用于确定获得的稳定转染物的百分比。
请注意染色细胞在此过程后将无法存活。
所需的材料:
- 亚甲蓝
- 甲醇
- 冷去离子水
- 光学显微镜
- 在合适的药物中选择大约14天后,在显微镜下监测培养物中存活细胞克隆的存在。当明显的存活细胞“岛”可见,非转染细胞已经死亡,继续步骤2。
- 在50-70%甲醇中制备含有2%亚甲基蓝的染色剂。
- 抽吸法将培养基从细胞中除去。
- 向细胞中加入足够的染色剂以覆盖培养皿的底部。
- 孵育5分钟。
- 去除污渍,用去离子水轻轻冲洗。甩掉多余的水分。
- 让盘子自然风干。这些平板可以在室温下储存。
- 计数菌落数,根据细胞稀释度和原细胞数计算转染物百分比。
组成的解决方案
1X HBSS(汉克斯平衡盐溶液)
5毫米 |
氯化钾 | |
0.3毫米 |
KH2阿宝4 | |
138毫米 |
生理盐水 | |
4毫米 |
NaHCO3. | |
0.3毫米 |
Na2HPO4 | |
5.6毫米 |
葡萄糖 |
最终pH值应为7.1。
1 x PBS
137毫米 |
生理盐水 | |
2.7毫米 |
氯化钾 | |
4.3毫米 |
Na2HPO4 | |
1.47毫米 |
KH2阿宝4 |
最终pH值应为7.1。
1 x Trypsin-EDTA解决方案
0.05% |
胰蛋白酶(w / v) | |
0.53毫米 |
乙二胺四乙酸 |
溶解在不含钙和镁的盐溶液中,如1X PBS或1X HBSS。
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ViaFect™转染试剂
ViaFect™转染试剂(猫。# E4981)是一种新型配方,旨在高效、低毒地将DNA转染到多种细胞系中。ViaFect™转染试剂已被证明可以相对高效地转染传统上被认为难以转染的细胞系(如造血、原代和iPSC干细胞系)。该方案不需要去除血清或培养基,也不需要在引入试剂/DNA复合物后清洗细胞或更换培养基。此外,ViaFect™转染试剂不包含任何动物源性成分。
技术公报和手册
TM409ViaFect™转染试剂技术手册
Promega出版物
FuGENE®HD转染试剂
FuGENE®HD转染试剂(猫。# E2311)是一种新型的非脂质体配方,可高效低毒地将DNA转染到多种细胞系中。该方案不需要去除血清(包括高达100%的血清)或培养基,也不需要在引入试剂:DNA复合物后清洗或更换培养基。此外,FuGENE®HD试剂支持在化学培养基中转染,不包含任何动物源性成分。有关FuGENE®HD转染试剂转染条件的更多信息,请访问转染助理.
技术公报和手册
TM328FuGENE®HD转染试剂技术手册
FuGENE®6转染试剂
FuGENE®6转染试剂(猫。# E2691)是一种非脂质体试剂,能高效、低毒地将DNA转染到多种细胞系中。该方案不需要去除血清或培养基,也不需要在引入试剂/DNA复合物后清洗或更换培养基。有关使用FuGENE®6转染试剂转染条件的更多信息,请访问转染助理.
技术公报和手册
TM350FuGENE®6转染试剂技术手册
Promega出版物
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