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3D模型的前景与挑战

约旦维拉纽瓦

我在显微镜下看到的这个小球有一种美丽的东西。它的直径只有200-250微米,比一粒盐还小。当我用手指撞盘子时,球在1毫米的井里滚动。对我来说,它可能看起来只是一个被照亮的圆圈中的一个黑点,但许多科学家认为它可能代表着肿瘤学研究和药物发现的未来。

这是一个周五的下午,我正盯着一个由大约1000个人类肝细胞组成的球体。Promega研究中心的科学家Mike Valley听说我对三维细胞培养模型很感兴趣,所以他邀请我去他在研究和发展中心的实验室亲自检查球形细胞。Mike正在开发一种新的检测方法,随着细胞生物学研究的最新趋势,他知道优化3D培养的检测方法至关重要。

迈克告诉我:“我不确定这个比例是多少,但现在研究的方向确实转向了3D模型。”

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代表体内肿瘤生物学

随着我深入了解更多关于3D模型的知识,我发现越来越多的证据表明,2D和3D培养之间的生物学差异可能导致研究中不同的、有时相反的结论,而且3D模型通常更好地代表了细胞在体内的行为。

研究科学家德鲁·奈尔斯(Drew Niles)说:“你可以争辩说,3D技术在生理上并不绝对相关,但这是向前迈出的一步。这就是我们对模型所做的:试图让它们更具有代表性。我想所有人都意识到3D技术是向前迈出的一步。”


“这就是我们对模特一直在做的事情:试图让她们更有代表性。我想所有人都意识到3D技术是向前迈出的一步。”


“所有的模型都是错误的,但有些是有用的,”高级产品经理Terry Riss说,他指的是统计学家George Box。

在二维培养中,细胞通常被镀在平坦的单层中。单侧附着诱导了许多细胞不自然的极性。这也意味着每个细胞都能平等地获得营养和氧气,从而形成均匀的生长和增殖。每个细胞可能处于相同的代谢状态,这在体内是罕见的。相比之下,肿瘤表现出高度的异质性,一些细胞活跃增殖,另一些细胞静止,还有一些坏死。这个问题在三维球体中不太普遍,因为随着直径的增加,营养梯度逐渐出现。随着球体的生长,核心的细胞开始经历氧气暴露的减少。这会导致缺氧梯度,导致内层静止甚至坏死。

2D和3D培养的细胞外基质(ECM)的性质也不同。虽然ECM确实在二维培养中形成,但它不能再现体内所见的肿瘤微环境的分布和复杂性。在3D培养中,细胞不仅彼此靠近,而且它们会形成一层更厚、密度更大的ECM,包围它们,形成细胞与环境之间的屏障。德鲁说:“依恋依赖对癌细胞来说很重要。”“ECM将细胞粘在一起,使其更像真正的肿瘤块。”ECM的组成和分布为实体肿瘤中细胞与ECM之间的相互作用如何影响细胞行为(如增殖、分化和迁移)提供了更真实的表征。

除了营养梯度和ECM的形成,3D模型可以反映体内肿瘤周围细胞的变化。研究人员可以将免疫细胞和任何其他相关细胞类型添加到癌细胞培养中,以更好地了解这些相互作用如何影响肿瘤本身的生物学。

“有些癌症非常擅长吸收其他细胞的活动,”德鲁说。“我认为,目前2D模型很难重现肿瘤模型,但在3D中,球体本身可以有多个细胞谱系,这或多或少模拟了组织中存在的实际肿瘤。”

检测技术发展面临的挑战

随着研究人员越来越多地转向3D技术,Promega的科学家认识到需要制定在这些系统中有效的分析方法。三维模型中的ECM涂层常常阻止试剂穿透到球体的中心。例如,CellTiter-Glo®细胞活力测定法是一种基于ATP检测的生物发光测定法,因此不完全裂解意味着系统中存在的很多ATP不能被测量,从而产生不准确的结果。

"用原来的CellTiter-Glo®产品,我们注意到,随着结构变得越来越大,我们用酸提取的ATP量与我们按照原始程序提取的ATP量之间存在偏差,”特里说。“这实际上导致了重新制定ATP检测范围,以制造CellTiter-Glo®3 d。”

在CellTiter-Glo的例子中®, Promega的科学家发现,溶解试剂无法到达球体中心的细胞。他们通过添加更多的洗涤剂和增加暴露时间来增加试剂的溶解能力,从而使渗透更深,溶解更彻底。不过,同样的逻辑可能并不适用于每一种化验。在某些情况下,不需要改变试剂的组成,如在RealTime-Glo™MT细胞活力测定中。

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许多研究人员已经发表了使用RealTime-Glo™MT细胞活力测定3D模型的文章,Promega的科学家已经证实,目前为止测试的细胞模型的活力结果是可靠的。然而,重要的是要记住,一种特定的试验可能没有对每一种可用的模型或细胞类型进行过测试。特里说:“在所有这些测试中,需要注意的是,不同的细胞表现不同。”“球状体可能更松散或更紧密,所以我们总是说,‘这是一个建议,但你需要用你自己的细胞来验证。’”

Promega目前提供了13种已经通过3D培养进行测试的检测方法,但像迈克和德鲁这样的科学家一直在努力跟上这一趋势。随着Promega收到越来越多的关于将分析应用于3D培养的请求,他们继续开发更多的建议,以从这些复杂的系统中获得答案。

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“有些事情只有当你撸起袖子去做的时候,你才会发现。”


“艺术多于科学”

在我第一次拜访的几天后,我和迈克回到了实验室。他准备对我之前检查过的细胞进行化验。当我看着迈克从两个盘子中取出介质时,我意识到这是我见过的最慢的,只有70 μ l的液体。他用的是一个8通道的电子移液器,但清空每排井大约需要7秒。

“你必须小心你的移液速度,因为微生物组织会四处移动,”迈克告诉我。“实际上,我们必须购买运行速度低于每秒10 μ l的移液器。我们越慢越好。”

它是如此的慢,以至于看它几乎是痛苦的。我只用一个单通道手动移液器就能轻松地在更短的时间内完成同样的任务,我无法想象每天以那样的速度工作有多乏味,但迈克坚持认为这样更安全。

“我给了其他研发部门的人一些建议,其他研究微生物组织的人,但我忘了告诉他们速度。他们做了实验,最后,他们只遗漏了组织。我说,‘这是我的错,我很抱歉,但这很有趣。’”

与我交谈过的所有Promega科学家都分享了他们在第一次使用3D模型时发现的意外问题的故事。“说实话,这更像是艺术而不是科学,”德鲁说。“有些事情只有当你撸起袖子去做的时候,你才会发现。”研究科学家Natascha Karassina提到了一组实验,其中细胞未能聚集成一个球形,甚至提供平板和细胞的公司也无法解释原因。Terry描述了这样的场景:刚接触3D模型的研究人员被细胞裂解后可见的球状体所迷惑,这表明裂解是无效的。他解释说,细胞膜可以被溶解,释放ATP,但ECM和其他细胞:细胞的相互作用可以保持球体的整体结构在一起,使其保持可见。

最重要的是,人们普遍认为这些方法需要标准化,以确保可复制性和最小化可变性。目前还没有一种制作3D结构的万能方法,这主要是因为每种肿瘤细胞类型都是不同的。Drew说道:“有些人可能只是因为对他们来说更容易而选择2D,但我认为所有人最终都会在某种程度上接受3D。”

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3D模型的未来

这些3D系统对从事药物研发的科学家很有吸引力,因为它们通常能更准确地反映药物对体内细胞的影响。例如,Kota等人(2018年)使用高通量筛选方法对胰腺上皮肿瘤细胞的3D球体进行筛选,发现了一种潜在的候选药物(Proscillaridin a),在传统的2D方法中,该药物无法被识别为选择性撞击。他们描述了药物渗透、细胞间相互作用和缺氧的差异,他们认为这些差异导致了截然不同的结果。

在药物研发过程之外,3D模型可能会彻底改变癌症治疗的临床方法。每一种癌症在基因上都是不同的,甚至单个突变都可能影响药物反应。研究人员正在开发利用患者的肿瘤样本创建3D类器官的方法,称为患者衍生类器官(PDOs)。当一组已知疗效的化合物应用于这些pdo时,结果对临床反应具有很高的可预测性。这些结果可以指导临床决策,类器官的基因组序列可以帮助研究人员发现特定突变和对不同药物反应之间的相关性。所有这些都有可能在未来简化治疗方案的开发,帮助患者更快地获得可能对特定癌症最有效的药物。

随着科学家们不断改进3D模型,解决关于标准化和可复制性的问题以及广泛实施的财务挑战将是至关重要的。在合适的条件下,也许这些系统可以在我们研究和治疗癌症的方式上引发一场革命。在体内再现肿瘤生物学方面的每一个进步都代表着改善医学和患者护理的巨大潜力,但从研究人员的角度来看,这些进步是一个微小的球体和一个极其缓慢的移液管一次取得的。

图片来源:Spheroid图片由Insphero提供,其他所有照片均由Wesley Bishop提供。