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荧光素酶报告基因分析用于解析GPCR通路

程志杰,艾琳·帕盖奥,丹尼斯·加文,皮特·斯特查,基思·伍德和弗兰克·范

Promega公司

摘要

G蛋白偶联受体(GPCRs),又称7TM受体,是细胞表面受体中最大的超家族。这些受体在多种生理过程的调节中起着关键作用,包括认知、代谢、炎症、免疫和细胞增殖以及发育。因此,GPCRs已成为流行的药物靶点;40%的已批准药物(或目前市场上的药物)直接靶向GPCRs。尽管有大量的GPCRs可作为潜在的药物靶点,但目前批准的药物只处理了一小部分已知受体;数百种其他化合物正在开发中。因此,该靶标类仍然是药物发现中非常感兴趣的领域。

简介

GPCRs的主要功能是通过与异三聚体G蛋白的胞内偶联跨质膜传递胞外信号。此外,新出现的证据表明GPCRs可以独立于G蛋白发出信号。异三聚体G蛋白根据其Gα亚基分为四个亚家族年代GG和G12.GPCRs激活后,Gα蛋白亚基与βγ-二聚体亚基分离,启动下游第二信使通路的级联,最终通过各种反应元件(RE)诱导基因转录,包括cAMP反应元件(CRE)、活化t细胞反应元件的核因子(NFAT-RE)、血清反应元件(SRE)和血清反应因子反应元件(SRF-RE)(图1)。

尽管有大量的GPCRs可作为潜在的药物靶点,但目前批准的药物只处理了一小部分已知受体;数百种其他化合物正在开发中。

许多GPCRs的G蛋白偶联谱尚未完全确定。一些GPCRs只与一种类型的G蛋白偶联(如G年代或G),但许多GPCRs偶联到广泛的G蛋白家族,如G/ G12G/ G12,或G/ G/ G12(1)。目前在GPCR筛选程序中采用的方法通过测定第二信使如cAMP、三磷酸肌醇(IP3)和细胞内Ca的变化来测量G蛋白信号2 +动员,这通常需要建立不同的分析平台,并需要针对每种途径的专门仪器,而且可能成本高昂。报告基因分析为研究和表征受体/G蛋白偶联提供了一个简单的解决方案,因为具有特定响应元件的报告载体(CRE, NFAT-RE, SRE, SRF-RE)可用于G年代GG和G12路径(图1)。

GPCR信号通路示意图。
图1。GPCR信号通路示意图。刺激后,G年代-偶联受体激活腺苷酸环化酶(AC),导致cAMP升高。G-偶联受体抑制AC, βγ亚基激活MAP激酶通路。G-偶联受体激活磷脂酶C (PLC)产生三磷酸肌醇,从而增加细胞内钙浓度。G12-偶联受体激活RhoA GTPase。

快速反应报告改进分析动态

报告基因系统被广泛用于研究GPCRs对基因调控的响应。报告基因有碱性磷酸酶、β-半乳糖苷酶、β-内酰胺酶、绿色荧光蛋白和荧光素酶等。其中,荧光素酶因其敏感性、广泛的动态范围、缺乏内源性活性和固有的低化合物文库干扰而成为高通量筛选的首选报告因子(2)。含有最小启动子和快速反应™荧光素酶的pGL4载体已被证明可以提高cAMP响应元件对G的响应性年代耦合的受体。我们进一步构建了不同pGL4载体的SRE和SRF-RE报告基因,并在HEK293细胞中瞬时表达。通过在荧光素酶c端添加蛋白降解序列hPEST和hCL,与没有降解信号的传统荧光素酶相比,SRE-和SRF-RE报告子均具有更大的诱导反应(75- 120倍),基础活性较低(图2)。此外,失稳荧光素酶反应迅速,在4-6小时内达到最大诱导。

快速反应荧光素酶反应速度快,缩短时间。
图2。快速反应™荧光素酶的使用增加了反应,同时减少了最大诱导时间。 luc2是萤火虫荧光素酶;luc2P为失稳元件hPEST (P)序列的萤火虫荧光素酶;luc2CP是萤火虫荧光素酶加上hCL1 (C)和hPEST失稳序列。HEK293细胞瞬时表达各种版本的SRE-或SRF-RE-报告子(与luc2luc2Pluc2CP)用20%胎牛血清+ 10ng/ml PMA诱导SRE,或用20%胎牛血清诱导SRF-RE。萤火虫荧光素酶活性在诱导后8小时内每2小时定量一次,使用荧光素酶测定系统(Cat。# e1500, e4030)。使用GloMax®96 Microplate Luminometer (Cat。# E6501)。

pGL4.33 [luc2P/SRE/Hygro]矢量和pGL4.34[luc2P载体分别含有SRE和SRF-RE,位于最小启动子和快速反应™荧光素酶上游。已知SRE响应三元复合因子(TCF)依赖的MAP激酶途径,而SRF-RE是一种缺乏TCF结合域的SRE突变形式,被设计用于响应srf依赖和TCF不依赖的途径,如RhoA激活。GPCRs,特别是与Gi和Gq偶联的GPCRs可以激活MAPK通路,诱导SRE的转录激活12已知Rho鸟嘌呤核苷酸交换因子(rhogef)家族可以激活,从而激活RhoA和SRF-RE的转录激活(3)。

瞬时转染pGL4.33和pGL4.34报告载体的HEK293细胞在GPCR激活后荧光素酶的表达有很大的动态范围(图3)-偶联)和SRE报告在各种激动剂治疗6小时后显示50倍诱导。在激动剂中,毒蕈碱氯是最有效的,有一个EC5019nM,其次是卡巴醇,然后是匹罗卡品。在卡巴科尔存在的情况下测试了两种拮抗剂:东莨菪碱与IC500.07nM的浓度比吡仁zipine更有效。同样,SRF-RE与血栓素A2受体(G12-耦合)显示了激动剂(120倍诱导)和拮抗剂的剂量-反应曲线。激动剂的效价排名为I-BOP (EC50=0.16nM) > U46619 = U44069,拮抗剂为BM-531 > SQ-29548。其效价排序与之前的报道一致,表明荧光素酶报告子实验的结果反映了生物学相关条件(4-5)。

使用SRE和SRF-RE报告器对激动剂和拮抗剂进行排名。
图3。使用SRE和SRF-RE报告器对激动剂和拮抗剂进行排名。HEK293细胞瞬时共转染SRE-luc2P和m3毒蕈碱受体(M3R)-Renilla或者SRF-RE-luc2P,血栓素A2受体(TPA2)和Renilla荧光素酶。转染24小时后,通过添加1:3稀释的激动剂或拮抗剂(在激动剂存在的情况下)诱导细胞6小时,然后使用Dual-Glo®荧光素酶测定系统(Cat)测定萤火虫荧光素酶活性。# E2920)的96口井格式。M3R用10nM卡巴可,TPA2用10nM U46619作激动剂。折叠感应=萤火虫RLU诱导/萤火虫RLUnoninduced;% control = 100 x萤火虫RLU激动剂+拮抗剂/萤火虫RLU只受体激动剂.都被标准化为RenillaRLU。

GPCR高通量筛选的高质量检测方法

Z´因子是在药物发现的高通量筛选中用于评估分析性能的主要统计参数。Z´因子确定为:Z´= 1 - [(3 × SD高+ 3 × SD低)/(平均高-平均低)]。Z´因子越接近1,检测质量越好。一般来说,> - 0.5的HTS值是可以接受的。选择4种GPCRs: D1多巴胺受体、m4毒蕈碱受体、m3毒蕈碱受体和内源性EDG受体。已知它们都与G结合年代GG和G12与相应报告载体在HEK293细胞中稳定共表达(CRE和NFAT-RE)或瞬时共表达(SRE和SRF-RE)。然后用激动剂刺激细胞,并确定Z´-因子值来评估测定性能(图4)。在384孔板格式中,所有测定均显示Z´-因子值显著高于0.5,响应动态(折叠诱导)范围为11- 366倍。

GPCR检测Gs-, Gi-, Gq-和g12偶联受体。
图4。GPCR检测G年代- - - - - -, G- - - - - -, G-和G12-偶联受体在GPCR检测。HEK293细胞使用稳定表达的D1多巴胺受体和CRE-luc2P或m3毒蕈碱受体与NFAT-RE-luc2P报告基因,或瞬时表达m4毒蕈碱受体与SRE-luc2CP记者或SRF-RE-luc2P报告细胞(内源性EDG受体)。用激动剂384孔诱导细胞。激动剂使用和诱导次数:1µM多巴胺4小时;1 μ M氯化毒蕈碱8小时;10µM乙酰胆碱2小时;10 μ M LPA 6小时。使用ONE-Glo™荧光素酶测定系统(Cat)测定萤火虫荧光素酶活性。# e6110, e6120)。折叠感应=萤火虫RLU诱导/萤火虫RLUnoninduced.Z´值确定为Z´= 1 - [3 × SD诱导+ 3 × sdnoninduced/(平均诱导——平均noninduced)]。

利用荧光素酶报告基因分析破译GPCR下游信号通路

GPCRs可以在一种细胞类型中与多个G蛋白偶联,也可以以细胞类型依赖的方式与不同的G蛋白偶联。此外,越来越多的证据表明,同一受体可以根据配体的不同,以不同的强度激活多个信号通路,这些配体通过正构或变构方式与受体结合(6)。这对于开发通路特异性药物具有很大的潜力,这些药物可以提高疗效,减少副作用,并为化合物筛选增加另一个检测复杂性。尽管有很大的兴趣,但在目前的药物筛选实践中,包括受体/ g蛋白分析的进展缓慢,部分原因是建立多个分析平台的巨大负担。

尽管对受体/ g蛋白分析有很大兴趣,但将GPCRs纳入当前药物筛选实践的进展缓慢。

荧光素酶报告法简单,灵敏,易于建立。更重要的是,它可以测量G年代GG和G12途径在单一的分析格式,因此是非常适合药理学研究。例如,已知m3毒蕈碱受体与G和G12多种细胞类型的通路。当与单个报告载体共表达时,激动剂卡波酚激活m3毒蕈碱受体时,不同强度的响应元素CRE、NFAT-RE、SRE和SRF-RE诱导荧光素酶的剂量依赖表达(图5)。如表1所示,NFAT-RE和SRE报告载体测定显示出相似的EC50受体激活值,证实m3毒蕈碱受体激活导致细胞内钙浓度增加和MAP激酶激活;两者都是由G介导的蛋白质。欧共体50SRF-RE报告试验值与SRE和NFAT-RE报告试验值在同一对数范围内,表明m3毒蕈碱受体与G12蛋白质和G.相比之下,电子商务50CRE报告试验的值比其他报告试验的值高近3个对数,这与先前的报道一致,m3毒蕈碱受体与G年代(7).所有EC50通过m3毒蕈碱受体报告分析,不同信号通路的值显示出与使用其他检测技术相似或更好的敏感性(表1)。因此,荧光素酶报告技术能够以单一的检测格式研究g蛋白激活谱。

m3毒蕈碱受体激活G蛋白的分析。
图5。m3毒蕈碱受体激活G蛋白的分析。HEK293细胞瞬时表达多种荧光素酶报告细胞(CRE/luc2PNFAT-RE /luc2P行为/luc2PSRF-RE /luc2P)加入或不加入M3R,用卡巴醇在96孔模式下诱导6小时。萤火虫荧光素酶活性使用ONE-Glo™检测系统(Cat。# e6110, e6120)。折叠感应=萤火虫RLU诱导/萤火虫RLUnoninduced.电子商务50使用GraphPad Prism®软件生成值。
荧光素酶报告法与其他测定法对m3毒蕈碱受体活化的EC50值比较。
表1。电子商务比较50荧光素酶报告和其他测定方法对m3毒蕈碱受体激活的价值。

总结

在这里,我们已经证明了快速反应™荧光素酶报告器非常适合研究GPCR信号通路和药物发现中的高通量筛选。GPCR调节剂可以很容易地评估其作为激动剂或拮抗剂的效力,结果反映了生物学相关的条件。荧光素酶报告分析很容易应用于高Z´因子值的高通量筛选。在单一检测格式中,单个GPCR途径(G年代GG和G12)可分别使用CRE-、NFAT、SRE-和SRF-RE报告载体测定法测定。

参考文献

  1. Wettschureck N.和Offermanns S. (2005)哺乳动物G蛋白及其细胞类型特异性功能。杂志。牧师。85, 1159 - 204。
  2. 范,F.和伍德,K. (2007)用于高通量筛选的生物发光分析。分析、药物开发技术。5127 - 36。
  3. 希尔,C.S.和Treisman, R. (1995)血清、溶血磷脂酸、G蛋白和多肽生长因子对c-fos启动子元件的差异激活。EMBO J。14, 5037 - 47。
  4. Offermanns, S。et al。(1994)转染的毒蕈碱乙酰胆碱受体选择性偶联gi型G蛋白和Gq/11。摩尔。杂志。45890 - 8。
  5. 张,L。et al。(2006)G12G蛋白家族作为血栓素a的报告者2受体的活动。摩尔。杂志。69, 1433 - 40。
  6. 克里斯托oulos, A.和Kenakin, T. (2002)G蛋白偶联受体变构作用和络合。杂志。牧师。54, 323 - 74。
  7. 纳霍斯基,s.r.,托宾,A.B.和威拉斯,G.B. (1997)毒蕈碱M3受体偶联与调控。生命科学。601039 - 45。

萤火虫荧光素酶报告载体

我们的向量报告使用优化的各种途径的活动luc2pGL4主链中的萤火虫荧光素酶基因。
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